Method of isolation and initiation of in vitro culture of microspores using early-medium to medium stage in spring barley
Przedmiotem zgłoszenia jest sposób izolacji i inicjacji kultury in vitro mikrospor z wykorzystaniem stadium wczesno-średniego do średniego jęczmienia jarego, który polega na tym, że świeżo ścięte kłosy tnie się na ok. 1 cm fragmenty i umieszcza się w schłodzonej komorze blendera. Kłosy blenduje się...
Gespeichert in:
Hauptverfasser: | , , , , |
---|---|
Format: | Patent |
Sprache: | eng ; pol |
Schlagworte: | |
Online-Zugang: | Volltext bestellen |
Tags: |
Tag hinzufügen
Keine Tags, Fügen Sie den ersten Tag hinzu!
|
container_end_page | |
---|---|
container_issue | |
container_start_page | |
container_title | |
container_volume | |
creator | CHMIELEWSKA, BEATA SZAREJKO, IWONA ZBIESZCZYK, JUSTYNA GAJECKA, MONIKA JELONEK, JANUSZ |
description | Przedmiotem zgłoszenia jest sposób izolacji i inicjacji kultury in vitro mikrospor z wykorzystaniem stadium wczesno-średniego do średniego jęczmienia jarego, który polega na tym, że świeżo ścięte kłosy tnie się na ok. 1 cm fragmenty i umieszcza się w schłodzonej komorze blendera. Kłosy blenduje się dwukrotnie w 0,4 M mannitolu przy wolnych obrotach. Zblendowane kłosy przepuszcza się przez 100 µm sterylny filtr do pojemnika znajdującego się na lodzie. Resztki kłosów zbiera się z filtra i blenduje dwukrotnie w 0,4 M mannitolu w celu uwolnienia jak największej liczby mikrospor i ponownie filtruje przez 100 µm filtr. Zawiesinę mikrospor przelewa się do probówki i wiruje przy 120 - 130 x g przez 8 - 10 min w temperaturze 4°C następnie usuwa się supernatant a osad mikrospor zawiesza się w 0,55 M maltozy. Zawiesinę przenosi się do nowej sterylnej probówki i na powierzchnię nanosi się 0,4 M mannitol i wiruje w gradiencie stężeń przy 100 - 110 x g przez 8 - 10 min w temperaturze 4°C w celu oddzielenia mikrospor żywotnych, znajdujących się na granicy faz, od nieżywotnych znajdujących się w pelecie. Mikrospory znajdujące się na granicy faz w pierścieniu zbiera się i wiruje w celu ich osadzenia przy 120 - 130 x g przez 8 - 10 min w temperaturze 4°C. Następnie osusza się osad mikrospor, a mikrospory zawiesza się w pożywce SMB1 do gęstości 100 000 - 150 000 mikrospor na 1 ml pożywki wyłożone na szalkę i inkubuje się korzystnie przez 48 h w temperaturze 25°C. Następnie pożywkę SMB1 wymienia się na pożywkę KBP zmodyfikowaną poprzez dodanie hydrolizatu kazeiny i kwasów organicznych do gęstości 100 000 - 150 000 mikrospor na 1 ml pożywki wyłożone na szalkę. Kulturę in vitro na zmodfikowanej pożywce KBP prowadzi się przez 7 dni w temperaturze 25°C w ciemności. Po tym czasie dodaje się świeżej pożywki KBP i kulturę kontynuuje się przez 2 tygodnie w tych samych warunkach z wytrząsaniem przy 100 rpm. Następnie usuwa się pożywkę KBP, a umorzone struktury wielokomórkowe przenosi się na pożywkę różnicującą KBPD na filtry bibułowe. Kulturę prowadzi się w temperaturze 25°C w ciemności przez 2 tygodnie. Po tym czasie struktury wielokomórkowe przenosi się na pożywkę regenerującą K4NB, a kulturę prowadzi się w tych samych warunkach przez 5 dni i następnie przenosi na światło przy 16 h fotoperiodzie w temperaturze 24°C. Z kultury zregenerowane zielone rośliny przekłada się na świeżą pożywkę K4NB celem ich wzrostu i gdy korzeń jest rozwinięty rośliny przenosi się do ziemi. |
format | Patent |
fullrecord | <record><control><sourceid>epo_EVB</sourceid><recordid>TN_cdi_epo_espacenet_PL428948A1</recordid><sourceformat>XML</sourceformat><sourcesystem>PC</sourcesystem><sourcerecordid>PL428948A1</sourcerecordid><originalsourceid>FETCH-epo_espacenet_PL428948A13</originalsourceid><addsrcrecordid>eNqFjL8KwjAQxrs4iPoM3gt0UDvUUURxUHBwL7G91oMkF3IXoW-vwe5O378f37wYb6gv7oB7IGFrlNiD8R2QJ6VfzJuHN2lkaJPVFDF3jtrIEjiiQBLyA6CJdiwddpQcKMPkRM2A-UJCzNjzi-G4LGa9sYKrSRfF-nx6HC8lBm5QgmnRozb3a7Wt91V92Oz-Ex8OWEYu</addsrcrecordid><sourcetype>Open Access Repository</sourcetype><iscdi>true</iscdi><recordtype>patent</recordtype></control><display><type>patent</type><title>Method of isolation and initiation of in vitro culture of microspores using early-medium to medium stage in spring barley</title><source>esp@cenet</source><creator>CHMIELEWSKA, BEATA ; SZAREJKO, IWONA ; ZBIESZCZYK, JUSTYNA ; GAJECKA, MONIKA ; JELONEK, JANUSZ</creator><creatorcontrib>CHMIELEWSKA, BEATA ; SZAREJKO, IWONA ; ZBIESZCZYK, JUSTYNA ; GAJECKA, MONIKA ; JELONEK, JANUSZ</creatorcontrib><description>Przedmiotem zgłoszenia jest sposób izolacji i inicjacji kultury in vitro mikrospor z wykorzystaniem stadium wczesno-średniego do średniego jęczmienia jarego, który polega na tym, że świeżo ścięte kłosy tnie się na ok. 1 cm fragmenty i umieszcza się w schłodzonej komorze blendera. Kłosy blenduje się dwukrotnie w 0,4 M mannitolu przy wolnych obrotach. Zblendowane kłosy przepuszcza się przez 100 µm sterylny filtr do pojemnika znajdującego się na lodzie. Resztki kłosów zbiera się z filtra i blenduje dwukrotnie w 0,4 M mannitolu w celu uwolnienia jak największej liczby mikrospor i ponownie filtruje przez 100 µm filtr. Zawiesinę mikrospor przelewa się do probówki i wiruje przy 120 - 130 x g przez 8 - 10 min w temperaturze 4°C następnie usuwa się supernatant a osad mikrospor zawiesza się w 0,55 M maltozy. Zawiesinę przenosi się do nowej sterylnej probówki i na powierzchnię nanosi się 0,4 M mannitol i wiruje w gradiencie stężeń przy 100 - 110 x g przez 8 - 10 min w temperaturze 4°C w celu oddzielenia mikrospor żywotnych, znajdujących się na granicy faz, od nieżywotnych znajdujących się w pelecie. Mikrospory znajdujące się na granicy faz w pierścieniu zbiera się i wiruje w celu ich osadzenia przy 120 - 130 x g przez 8 - 10 min w temperaturze 4°C. Następnie osusza się osad mikrospor, a mikrospory zawiesza się w pożywce SMB1 do gęstości 100 000 - 150 000 mikrospor na 1 ml pożywki wyłożone na szalkę i inkubuje się korzystnie przez 48 h w temperaturze 25°C. Następnie pożywkę SMB1 wymienia się na pożywkę KBP zmodyfikowaną poprzez dodanie hydrolizatu kazeiny i kwasów organicznych do gęstości 100 000 - 150 000 mikrospor na 1 ml pożywki wyłożone na szalkę. Kulturę in vitro na zmodfikowanej pożywce KBP prowadzi się przez 7 dni w temperaturze 25°C w ciemności. Po tym czasie dodaje się świeżej pożywki KBP i kulturę kontynuuje się przez 2 tygodnie w tych samych warunkach z wytrząsaniem przy 100 rpm. Następnie usuwa się pożywkę KBP, a umorzone struktury wielokomórkowe przenosi się na pożywkę różnicującą KBPD na filtry bibułowe. Kulturę prowadzi się w temperaturze 25°C w ciemności przez 2 tygodnie. Po tym czasie struktury wielokomórkowe przenosi się na pożywkę regenerującą K4NB, a kulturę prowadzi się w tych samych warunkach przez 5 dni i następnie przenosi na światło przy 16 h fotoperiodzie w temperaturze 24°C. Z kultury zregenerowane zielone rośliny przekłada się na świeżą pożywkę K4NB celem ich wzrostu i gdy korzeń jest rozwinięty rośliny przenosi się do ziemi.</description><language>eng ; pol</language><subject>AGRICULTURE ; ANIMAL HUSBANDRY ; FISHING ; FORESTRY ; HUMAN NECESSITIES ; HUNTING ; NEW PLANTS OR PROCESSES FOR OBTAINING THEM ; PLANT REPRODUCTION BY TISSUE CULTURE TECHNIQUES ; TRAPPING</subject><creationdate>2020</creationdate><oa>free_for_read</oa><woscitedreferencessubscribed>false</woscitedreferencessubscribed></display><links><openurl>$$Topenurl_article</openurl><openurlfulltext>$$Topenurlfull_article</openurlfulltext><thumbnail>$$Tsyndetics_thumb_exl</thumbnail><linktohtml>$$Uhttps://worldwide.espacenet.com/publicationDetails/biblio?FT=D&date=20200824&DB=EPODOC&CC=PL&NR=428948A1$$EHTML$$P50$$Gepo$$Hfree_for_read</linktohtml><link.rule.ids>230,308,780,885,25564,76547</link.rule.ids><linktorsrc>$$Uhttps://worldwide.espacenet.com/publicationDetails/biblio?FT=D&date=20200824&DB=EPODOC&CC=PL&NR=428948A1$$EView_record_in_European_Patent_Office$$FView_record_in_$$GEuropean_Patent_Office$$Hfree_for_read</linktorsrc></links><search><creatorcontrib>CHMIELEWSKA, BEATA</creatorcontrib><creatorcontrib>SZAREJKO, IWONA</creatorcontrib><creatorcontrib>ZBIESZCZYK, JUSTYNA</creatorcontrib><creatorcontrib>GAJECKA, MONIKA</creatorcontrib><creatorcontrib>JELONEK, JANUSZ</creatorcontrib><title>Method of isolation and initiation of in vitro culture of microspores using early-medium to medium stage in spring barley</title><description>Przedmiotem zgłoszenia jest sposób izolacji i inicjacji kultury in vitro mikrospor z wykorzystaniem stadium wczesno-średniego do średniego jęczmienia jarego, który polega na tym, że świeżo ścięte kłosy tnie się na ok. 1 cm fragmenty i umieszcza się w schłodzonej komorze blendera. Kłosy blenduje się dwukrotnie w 0,4 M mannitolu przy wolnych obrotach. Zblendowane kłosy przepuszcza się przez 100 µm sterylny filtr do pojemnika znajdującego się na lodzie. Resztki kłosów zbiera się z filtra i blenduje dwukrotnie w 0,4 M mannitolu w celu uwolnienia jak największej liczby mikrospor i ponownie filtruje przez 100 µm filtr. Zawiesinę mikrospor przelewa się do probówki i wiruje przy 120 - 130 x g przez 8 - 10 min w temperaturze 4°C następnie usuwa się supernatant a osad mikrospor zawiesza się w 0,55 M maltozy. Zawiesinę przenosi się do nowej sterylnej probówki i na powierzchnię nanosi się 0,4 M mannitol i wiruje w gradiencie stężeń przy 100 - 110 x g przez 8 - 10 min w temperaturze 4°C w celu oddzielenia mikrospor żywotnych, znajdujących się na granicy faz, od nieżywotnych znajdujących się w pelecie. Mikrospory znajdujące się na granicy faz w pierścieniu zbiera się i wiruje w celu ich osadzenia przy 120 - 130 x g przez 8 - 10 min w temperaturze 4°C. Następnie osusza się osad mikrospor, a mikrospory zawiesza się w pożywce SMB1 do gęstości 100 000 - 150 000 mikrospor na 1 ml pożywki wyłożone na szalkę i inkubuje się korzystnie przez 48 h w temperaturze 25°C. Następnie pożywkę SMB1 wymienia się na pożywkę KBP zmodyfikowaną poprzez dodanie hydrolizatu kazeiny i kwasów organicznych do gęstości 100 000 - 150 000 mikrospor na 1 ml pożywki wyłożone na szalkę. Kulturę in vitro na zmodfikowanej pożywce KBP prowadzi się przez 7 dni w temperaturze 25°C w ciemności. Po tym czasie dodaje się świeżej pożywki KBP i kulturę kontynuuje się przez 2 tygodnie w tych samych warunkach z wytrząsaniem przy 100 rpm. Następnie usuwa się pożywkę KBP, a umorzone struktury wielokomórkowe przenosi się na pożywkę różnicującą KBPD na filtry bibułowe. Kulturę prowadzi się w temperaturze 25°C w ciemności przez 2 tygodnie. Po tym czasie struktury wielokomórkowe przenosi się na pożywkę regenerującą K4NB, a kulturę prowadzi się w tych samych warunkach przez 5 dni i następnie przenosi na światło przy 16 h fotoperiodzie w temperaturze 24°C. Z kultury zregenerowane zielone rośliny przekłada się na świeżą pożywkę K4NB celem ich wzrostu i gdy korzeń jest rozwinięty rośliny przenosi się do ziemi.</description><subject>AGRICULTURE</subject><subject>ANIMAL HUSBANDRY</subject><subject>FISHING</subject><subject>FORESTRY</subject><subject>HUMAN NECESSITIES</subject><subject>HUNTING</subject><subject>NEW PLANTS OR PROCESSES FOR OBTAINING THEM</subject><subject>PLANT REPRODUCTION BY TISSUE CULTURE TECHNIQUES</subject><subject>TRAPPING</subject><fulltext>true</fulltext><rsrctype>patent</rsrctype><creationdate>2020</creationdate><recordtype>patent</recordtype><sourceid>EVB</sourceid><recordid>eNqFjL8KwjAQxrs4iPoM3gt0UDvUUURxUHBwL7G91oMkF3IXoW-vwe5O378f37wYb6gv7oB7IGFrlNiD8R2QJ6VfzJuHN2lkaJPVFDF3jtrIEjiiQBLyA6CJdiwddpQcKMPkRM2A-UJCzNjzi-G4LGa9sYKrSRfF-nx6HC8lBm5QgmnRozb3a7Wt91V92Oz-Ex8OWEYu</recordid><startdate>20200824</startdate><enddate>20200824</enddate><creator>CHMIELEWSKA, BEATA</creator><creator>SZAREJKO, IWONA</creator><creator>ZBIESZCZYK, JUSTYNA</creator><creator>GAJECKA, MONIKA</creator><creator>JELONEK, JANUSZ</creator><scope>EVB</scope></search><sort><creationdate>20200824</creationdate><title>Method of isolation and initiation of in vitro culture of microspores using early-medium to medium stage in spring barley</title><author>CHMIELEWSKA, BEATA ; SZAREJKO, IWONA ; ZBIESZCZYK, JUSTYNA ; GAJECKA, MONIKA ; JELONEK, JANUSZ</author></sort><facets><frbrtype>5</frbrtype><frbrgroupid>cdi_FETCH-epo_espacenet_PL428948A13</frbrgroupid><rsrctype>patents</rsrctype><prefilter>patents</prefilter><language>eng ; pol</language><creationdate>2020</creationdate><topic>AGRICULTURE</topic><topic>ANIMAL HUSBANDRY</topic><topic>FISHING</topic><topic>FORESTRY</topic><topic>HUMAN NECESSITIES</topic><topic>HUNTING</topic><topic>NEW PLANTS OR PROCESSES FOR OBTAINING THEM</topic><topic>PLANT REPRODUCTION BY TISSUE CULTURE TECHNIQUES</topic><topic>TRAPPING</topic><toplevel>online_resources</toplevel><creatorcontrib>CHMIELEWSKA, BEATA</creatorcontrib><creatorcontrib>SZAREJKO, IWONA</creatorcontrib><creatorcontrib>ZBIESZCZYK, JUSTYNA</creatorcontrib><creatorcontrib>GAJECKA, MONIKA</creatorcontrib><creatorcontrib>JELONEK, JANUSZ</creatorcontrib><collection>esp@cenet</collection></facets><delivery><delcategory>Remote Search Resource</delcategory><fulltext>fulltext_linktorsrc</fulltext></delivery><addata><au>CHMIELEWSKA, BEATA</au><au>SZAREJKO, IWONA</au><au>ZBIESZCZYK, JUSTYNA</au><au>GAJECKA, MONIKA</au><au>JELONEK, JANUSZ</au><format>patent</format><genre>patent</genre><ristype>GEN</ristype><title>Method of isolation and initiation of in vitro culture of microspores using early-medium to medium stage in spring barley</title><date>2020-08-24</date><risdate>2020</risdate><abstract>Przedmiotem zgłoszenia jest sposób izolacji i inicjacji kultury in vitro mikrospor z wykorzystaniem stadium wczesno-średniego do średniego jęczmienia jarego, który polega na tym, że świeżo ścięte kłosy tnie się na ok. 1 cm fragmenty i umieszcza się w schłodzonej komorze blendera. Kłosy blenduje się dwukrotnie w 0,4 M mannitolu przy wolnych obrotach. Zblendowane kłosy przepuszcza się przez 100 µm sterylny filtr do pojemnika znajdującego się na lodzie. Resztki kłosów zbiera się z filtra i blenduje dwukrotnie w 0,4 M mannitolu w celu uwolnienia jak największej liczby mikrospor i ponownie filtruje przez 100 µm filtr. Zawiesinę mikrospor przelewa się do probówki i wiruje przy 120 - 130 x g przez 8 - 10 min w temperaturze 4°C następnie usuwa się supernatant a osad mikrospor zawiesza się w 0,55 M maltozy. Zawiesinę przenosi się do nowej sterylnej probówki i na powierzchnię nanosi się 0,4 M mannitol i wiruje w gradiencie stężeń przy 100 - 110 x g przez 8 - 10 min w temperaturze 4°C w celu oddzielenia mikrospor żywotnych, znajdujących się na granicy faz, od nieżywotnych znajdujących się w pelecie. Mikrospory znajdujące się na granicy faz w pierścieniu zbiera się i wiruje w celu ich osadzenia przy 120 - 130 x g przez 8 - 10 min w temperaturze 4°C. Następnie osusza się osad mikrospor, a mikrospory zawiesza się w pożywce SMB1 do gęstości 100 000 - 150 000 mikrospor na 1 ml pożywki wyłożone na szalkę i inkubuje się korzystnie przez 48 h w temperaturze 25°C. Następnie pożywkę SMB1 wymienia się na pożywkę KBP zmodyfikowaną poprzez dodanie hydrolizatu kazeiny i kwasów organicznych do gęstości 100 000 - 150 000 mikrospor na 1 ml pożywki wyłożone na szalkę. Kulturę in vitro na zmodfikowanej pożywce KBP prowadzi się przez 7 dni w temperaturze 25°C w ciemności. Po tym czasie dodaje się świeżej pożywki KBP i kulturę kontynuuje się przez 2 tygodnie w tych samych warunkach z wytrząsaniem przy 100 rpm. Następnie usuwa się pożywkę KBP, a umorzone struktury wielokomórkowe przenosi się na pożywkę różnicującą KBPD na filtry bibułowe. Kulturę prowadzi się w temperaturze 25°C w ciemności przez 2 tygodnie. Po tym czasie struktury wielokomórkowe przenosi się na pożywkę regenerującą K4NB, a kulturę prowadzi się w tych samych warunkach przez 5 dni i następnie przenosi na światło przy 16 h fotoperiodzie w temperaturze 24°C. Z kultury zregenerowane zielone rośliny przekłada się na świeżą pożywkę K4NB celem ich wzrostu i gdy korzeń jest rozwinięty rośliny przenosi się do ziemi.</abstract><oa>free_for_read</oa></addata></record> |
fulltext | fulltext_linktorsrc |
identifier | |
ispartof | |
issn | |
language | eng ; pol |
recordid | cdi_epo_espacenet_PL428948A1 |
source | esp@cenet |
subjects | AGRICULTURE ANIMAL HUSBANDRY FISHING FORESTRY HUMAN NECESSITIES HUNTING NEW PLANTS OR PROCESSES FOR OBTAINING THEM PLANT REPRODUCTION BY TISSUE CULTURE TECHNIQUES TRAPPING |
title | Method of isolation and initiation of in vitro culture of microspores using early-medium to medium stage in spring barley |
url | https://sfx.bib-bvb.de/sfx_tum?ctx_ver=Z39.88-2004&ctx_enc=info:ofi/enc:UTF-8&ctx_tim=2024-12-24T06%3A24%3A46IST&url_ver=Z39.88-2004&url_ctx_fmt=infofi/fmt:kev:mtx:ctx&rfr_id=info:sid/primo.exlibrisgroup.com:primo3-Article-epo_EVB&rft_val_fmt=info:ofi/fmt:kev:mtx:patent&rft.genre=patent&rft.au=CHMIELEWSKA,%20BEATA&rft.date=2020-08-24&rft_id=info:doi/&rft_dat=%3Cepo_EVB%3EPL428948A1%3C/epo_EVB%3E%3Curl%3E%3C/url%3E&disable_directlink=true&sfx.directlink=off&sfx.report_link=0&rft_id=info:oai/&rft_id=info:pmid/&rfr_iscdi=true |